細胞/組織溶酶體粗提分離試劑盒產(chǎn)品說明書（中文版）

主要用途

細胞/組織溶酶體粗提分離試劑是一種旨在從動物細胞或組織中分離出完整而純化的溶酶體細胞器的而經(jīng)典的技術(shù)方法。該技術(shù)經(jīng)過精心研制、成功實驗證明的。適合于動物軟組織（肝或腦組織）和培養(yǎng)細胞的溶酶體的制備。產(chǎn)品不含污染性蛋白酶和核酶，即到即用，性能穩(wěn)定，分離產(chǎn)量和純度俱佳。

技術(shù)背景

溶酶體（lysosome）是一種普遍存在于真核細胞中的細胞器，含有酸性水解酶，例如酯酶、淀粉酶、蛋白酶、核酶等，分解各種細胞殘渣和廢棄物質(zhì)，包括過多的或破損的其它細胞器、食物顆粒、吞噬的細菌和病毒等。其大小為0.5至1.5微米，球圓形，溶酶體內(nèi)pH為5.0左右。溶酶體功能異常會引起溶酶體貯積癥（1ysosomal storage disorders；LSDs），例如家族性白癡?。═ay-sachs disease）和龐貝氏癥 （Pompe’s disease）。溶酶體細胞器的分離是現(xiàn)代細胞生物學(xué)研究的常用的手段之一。從任何組織或細胞分離溶酶體的技術(shù)方法基本上采用：*，通過機械或化學(xué)方法破裂細胞；第二，通過低速差速離心去除殘渣碎屑和巨大細胞器；第三，通過高速差速離心獲得溶酶體；甚至，第四，可以通過等密度離心獲得純度更高的溶酶體。 

產(chǎn)品內(nèi)容

清理液（Reagent A）                                  毫升
裂解液（Reagent B）                                  毫升
凈化液（Reagent C）                                  毫升
強化液（Reagent D）                                  毫升
分離液（Reagent E）                                  毫升
保存液（Reagent F）                                  毫升
產(chǎn)品說明書                                              1份
                                                 
保存方式

保存凈化液（Reagent C）在－20℃冰箱里，其余的保存在4℃冰箱里，有效保證6月 

用戶自備

HANK平衡鹽緩沖溶或PBS緩沖溶液：用于清理細胞
胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液：用于細胞脫離
*細胞培養(yǎng)液：用于細胞處理所需的培養(yǎng)基
15毫升錐形離心管：用于樣品操作的容器
50毫升錐形離心管：用于樣品操作的容器
1.5毫升離心管：用于樣品操作的容器
4℃臺式離心機：用于沉淀細胞
4℃超速離心機：用于分離細胞器成分
DOUNCE勻漿器：用于裂解組織細胞

實驗步驟

一、動物軟組織溶酶體分離（組織勻漿法）

實驗開始前，將－20℃冰箱里的凈化液（Reagent C）取出凍融，然后移出xx毫升凈化液（Reagent C）和xx毫升的裂解液（Reagent B）到15毫升錐形離心管里，混勻后，標記為裂解工作液，放進冰槽里備用。然后進行下列操作。（若需要完整版說明書可以直接客服！）

1．手術(shù)取出動物組織，并秤重以確定1克組織重量（實驗前使動物空腹12至24小時） 
2．（選擇步驟）放進預(yù)冷的50毫升錐形離心管
3．（選擇步驟）加入xx毫升清理液（Reagent A）清洗1次
4．即刻用刀片切碎組織
5．放進一個預(yù)冷的15毫升錐形離心管
6．加入xx毫升預(yù)冷的裂解工作液
7．渦旋震蕩5秒，充分混勻
8．即刻放入預(yù)冷的DOUNCE勻漿器
9．在冰槽里用勻漿棒勻化組織（約20至40下）（注意：參見注意事項8）
10．將所有組織勻漿物移入15毫升錐形離心管
11．放進4℃臺式離心機離心10分鐘，速度為1000g
12．小心移出上清液到另一個新的預(yù)冷的15毫升錐形離心管——此步驟去除細胞核和未溶解的細胞
13．放進4℃超速離心機離心10分鐘，速度為12000g
14．小心抽去上清液，保留沉淀顆粒 
15．加入xx毫升預(yù)冷的分離液（Reagent E），混勻
16．置于冰槽里孵育15分鐘
17．放進4℃超速離心機離心15分鐘，速度為25000g
18．小心抽去上清液，保留沉淀顆粒——此步驟獲得溶酶體沉淀物
19．（選擇步驟）加入xx毫升預(yù)冷的保存液（Reagent F）
20．（選擇步驟）放進4℃超速離心機再次離心15分鐘，速度為25000g
21．（選擇步驟）小心抽去上清液
22．加入xx微升保存液（Reagent F），充分混勻
23．即刻移入1.5毫升離心管，放進－70℃冰箱里

二、動物軟組織溶酶體分離（化學(xué)處理法）

實驗開始前，將－20℃冰箱里的凈化液（Reagent C）取出凍融，然后移出xx毫升凈化液（Reagent C）和xx毫升的裂解液（Reagent B）到15毫升錐形離心管里，混勻后，標記為裂解工作液，放進冰槽里備用。然后進行下列操作。（本說明書由上海哈靈生物科技有限公司提供）

1．手術(shù)取出動物組織，并秤重以確定1克組織重量（實驗前使動物空腹12至24小時） 
2．（選擇步驟）放進預(yù)冷的50毫升錐形離心管
3．（選擇步驟）加入xx毫升清理液（Reagent A）清洗1次
4．移入一個液氮凍存管
5．即刻放入液氮罐XX
6．次日從液氮罐里取出，即刻（快速度）碾碎組織成粉末（注意：切莫使組織凍融）
7．放進一個15毫升錐形離心管
8．加入xx毫升預(yù)冷的裂解工作液
9．渦旋震蕩5秒，充分混勻
10．在冰槽里孵育2分鐘，期間渦旋震蕩5秒一次
11．加入xx微升預(yù)冷的強化液（Reagent D）
12．渦旋震蕩5秒，充分混勻
13．在冰槽里孵育5分鐘，期間渦旋震蕩5秒二次（注意：參見注意事項9）
14．加入xx毫升預(yù)冷的保存液（Reagent E），輕輕搖動試管混勻
15．放進4℃臺式離心機離心10分鐘，速度為1000g
16．小心移出上清液到另一個新的預(yù)冷的15毫升錐形離心管——此步驟去除細胞核和未溶解的細胞
17．放進4℃超速離心機離心10分鐘，速度為12000g
18．小心抽去上清液，保留沉淀顆粒 
19．加入xx毫升預(yù)冷的分離液（Reagent E），混勻
20．置于冰槽里孵育15分鐘
21．放進4℃超速離心機離心15分鐘，速度為25000g
22．小心抽去上清液，保留沉淀顆粒——此步驟獲得溶酶體沉淀物
23．（選擇步驟）加入3毫升預(yù)冷的保存液（Reagent F）
24．（選擇步驟）放進4℃超速離心機再次離心15分鐘，速度為25000g
25．（選擇步驟）小心抽去上清液
26．加入500微升保存液（Reagent F），充分混勻
27．即刻移入1.5毫升離心管，放進－70℃冰箱里